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4º Extracción "casera" del ADN

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                              Materiales -Muestra (hígados de pollo) -Agua ( destilada o mineral -Sal de mesa -Bicarbonato sódico -Detergente líquido(fairy) -Alcohol etílico a 0 ºC -Mortero -Nevera -Colador( trozo de tela) -Vaso -Tubo de ensayo -Varilla fina -Arena                                Procedimiento Preparar el tampón con los siguientes ingredientes y mantener en la nevera. 120 ml de agua, si es posible destilada y si no mineral. No usar agua del grifo. 1,5 g de sal de mesa, preferiblemente pura. 5 g de bicarbonato sódico. 5 ml de detergente líquido o champú. Elegir la muestra que va a proporcionar el ADN  y cortarla. Triturar la muestra con un poco de agua y arena  en el mortero. Así se romperán muchas células y otras quedarán expuestas a la acción del detergente.        4.Mezclar en un recipiente limpio 5 ml del triturado celular con 10 ml del tampón  frío y agitar vigorosamente durante al menos 2 minutos. S

3ª Práctica: Observación de la Mitosis en Células de una Raíz de Cebolla.

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Materiales -microscopio -portaobjetos -cubreobjetos -lanceta estéril -cubeta de tinción -aguja enmanganada -pinzas -palillos -frasco lavador -mechero de alcohol -tijeras -papel de filtro -vaso de precipitados -vidrio de reloj -Orceinas A y B Procedimiento Llenar un vaso de precipitados con agua y sumergir la parte inferior de una cebolla en esta, sujetándola con 2-3 palillos, dejarla 3-4 dias hasta que aparezcan unas raicillas de 3 o 4 cm de longitud. Cortar con tijeras 2-3 mm del extremo de algunas raicillas y depositarlos en un vidrio de reloj junto a 2-3 ml de orceina A. Calentar el vidrio a la llama del mechero durante unos 8 minutos, evitando que hierva , hasta que emita unos vapores tenues. Con  las pinzas, cojer uno de los extremos de raiz del vidrio de reloj,colocarla en un portaobjetos con una gota de orceina B y dejarla 1 minuto colocar el cubreobjetos sobre la raiz y con el mango de una aguja enmanganada, dar unos golpecitos sobre el cubreobjetos, de m

Observación de tejidos

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Esta practica consistió en la observación de tejidos, tanto animales como vegetales, a través de un microscopio óptico. Estas son algunas de las muestras que observamos:                                    Colenguima angular                                               Tallo dicotiledonea                        Floema                                                                       Intestino Delgado                          Xilema                                                                           Tejido muscular estriado                                            Tejido oseo                                                                    Tejido muscular liso

2ª práctica: Reconocimiento de Lípidos y Prótidos

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 *Las pruebas están juntas porque las realizamos a la vez                           Materiales: -Tubos de ensayo -Gradilla -Varillas de vidrio -Mechero -Vasos de precipitados -Pipetas -Solución de NaOH al 20% Solución de HCl concentrado -Solución de Sudán III - Alcohol etílico -   Solución de SO 4 Cu al 1% -NaOH al 20% -Tinta china roja ( aunque como no teníamos, usamos  colorante alimenticio rojo) -Eter, cloroformo o acetona ( usamos la acetona) -Aceite de oliva -Clara de huevo o leche -Solución de albúmina a1 1-2%                                                  Lípidos                                                         Practica: Saponificación: - Colocar en un tubo de ensayo 2 ml de aceite y 2 ml de NaOH al 20%. - Agitar enérgicamente y colocar el tubo al baño María de 20 a 30 minutos -Pasado este tiempo, se pueden observar en el tubo 3 fases: una inferior clara que contiene la solución de sosa  sobrante junto con la glicerina formada, otra

1ª Práctica: Reconocimiento de Glúcidos

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                              Materiales: -Tubos de ensayo -Gradilla -Pinzas -Mechero -Pipeta -Solución de lugol -Soluciones de fehling A y B -Solución alcalina (sosa, potasa, bicarbonato...) -Ácido clorhídrico -Soluciones al 5% de: glucosa, fructuosa, sacarosa, lactosa y almidón                                 Practica: 1.Echar en tubos de ensayo 3 ml de las soluciones de glucosa, fructuosa ,sacarosa ,lactosa y almidón. 2.Añadir 1 ml de solución de fehling A 1 ml de la solución de fehling B. 3.Calentar los tubos con un mechero hasta que hiervan. 4.La reacción será positiva si la muestra se vuelve de color rojo y será negativa si queda azul o cambia a un tono azul-verdoso. 5.Observar y anotar resultados.                                                             Resultados: Todas las muestras dieron positivo, incluso la prueba con agua , ya que los tubos de ensayo no estaban bien lavados y contenían restos de otras sustancias.